Electrophorèse
de colloïdes
Auteurs : Participants à un stage ATOS (juin 1997) animé par Jean-Michel
PLAIS
Contexte
Matériel
L'électrophorèse
sur bandes d'acétate de cellulose
Exemple
de résultats
Contexte
L'étude de l'organisation des sols en Seconde, et notamment celle du
complexe argilo-humique, nous oriente vers l'évocation de la charge électrique
globalement négative des colloïdes argileux et humiques.
Classiquement, on «arrose» alors un échantillon de sol de solutions aqueuses
d'éosine ou de bleu de méthylène. L'interprétation de cette manipulation
nécessite d'admettre :
- que la solution d'éosine
contient des ions colorés chargés négativement et la solution de bleu
de méthylène des ions colorés chargés positivement,
- que ce sont les colloïdes,
et non un autre constituant du sol, qui sont chargés négativement.
Une électrophorèse utilisant la simple cuve présente dans la plupart
des établissements permet une approche plus satisfaisante de ce point
du programme. Il est possible d'obtenir une migration des colloïdes (ou
des ions colorés) en 15 minutes sur bande d'acétate de cellulose (ou éventuellement
de papier Whatmann) dans un simple tampon phosphate (ou même dans de l'eau
du robinet) sous une tension de 160 V.
Il est également possible d'approfondir le principe de l'électrophorèse
en séparant les constituants colorés d'un mélange bleu de méthylène-éosine
en fonction de leur charge électrique.
Cette manipulation permet donc de visualiser la charge électrique de
colloïdes extraits d'un sol ou de terreau. Elle présente aussi l'avantage
d'introduire simplement une technique réutilisée en Première et Terminale
S.
Matériel
:
Extraction des colloïdes
Terre franche
Terreau
Balance au g
2 coupelles de pesée
2 spatules
2 agitateurs magnétiques
2 barreaux aimantés
2 béchers 0,25 L
Soude N/10
Papier filtre
2 entonnoirs
2 supports à entonnoir
Préparation du tampon phosphate (environ
0,4 L/cuve)
Blance à 0,01 g
2 coupelles de pesée
2 spatules
2 éprouvettes 0,5 L
2 agitateurs magnétiques
2 barreaux aimantés
Eau distillée
Phosphate de potassium monobasique KH2PO4
Phosphate de sodium dibasique Na2HPO4,
xH2O (attention au degré d'hydratation de votre
produit, la masse à diluer en dépend!)
2 bouteilles étiquetées
Electrophorèse
Cuve
Alimentation
Suspension de colloïdes argileux
Suspension de colloïdes humiques
Micropipette + embouts, ou bilame, ou aiguille à canevas à chas coudé
à la flamme
Bandes d'acétate de cellulose (ou éventuellement de papier Whatmann)
Bocal avec mélange méthanol-eau (30%-70%) pour le stockage des bandes
d'acétate de cellulose après ouverture du sachet. Attention au méthanol
(Toxique, Facilement inflammable, R=11-23/25 S=2-7-16-24)
Pinces
Papier absorbant
L'électrophorèse
sur bandes d'acétate de cellulose
Les bandes se conservent indéfiniment
dans leur emballage d'origine à température ambiante. Après ouverture
du sachet, elles doivent être immergées dans un bocal fermé contenant
un mélange méthanol-eau (30%-70%). Ne pas les laisser se déshydrater car
leur structure peut s'altérer et l'acétate perdre ses caractéristiques.
Pour l'électrophorèse, immerger la bande d'acétate de cellulose 10 à 15
minutes dans le tampon (éviter que les bandes ne restent collèes
entre elles). Essore rapidement entre deux feuilles de papier absorbant.
Repérer la surface mate absorbante (vers soi quand on place la bande verticale,
coin coupé en bas à droite).
Positionner la ou les membranes sur le portoir, face mate au-dessus, correctement
tendues et placer les fixe-bandes.
Remplir chaque compartiment d'une même quantité de tampon (sans communication
entre les deux compartiments). Essuyer la partie centrale pour éviter
les court-circuits.
Déposer quelques µl de solution ou suspension à analyser (micropipette,
bilame, aiguille à chas coudé). Retendre éventuellement les bandes avec
précaution (la goutte ne doit pas couler).Mettre en place le support de
bande dans la cuve.
Régler la tension sur environ 160 V (un courant trop intense accélère
la migration mais provoque un échauffement trop important.
Exemples
de résutats
Electrophorèse d'une suspension de colloïdes humiques
(cuve Pierron, tampon phosphate pH7, durée 18 min)
Electrophorèse d'un mélange éosine/bleu de méthylène
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